超微量核酸蛋白分析仪是高精度光学仪器，在出厂前经过精细的装配和调试，如果能对仪器进行正确的使用和保养，不仅能保证仪器的可靠性和稳定性，也可以延长仪器使用寿命。那么仪器使用过程有哪些误区呢？下面，小编将为大家例举一下。
超微量核酸蛋白分析仪的使用误区：
1、测量核酸时发现结果不准：首先要确定核酸样品的纯度，如果是DNA样品，260/280比值应该在1.6-2.0之间。比值小于1.6说明有蛋白类物质的干扰，大于2.0说明有RNA的干扰。如果是RNA样品，260/280应该大于2.0，如果值偏高如2.5以上，可能是RNA降解的原因，如果小于2.0说明有蛋白类物质的干扰。
我们还可以通过230nm、和320nm处的吸收峰来判断样品的纯度，230表示存在以下污染物如：碳水化合物、多肽、苯酚等，核酸和蛋白在320nm处的吸收峰几乎为零，所以如果有吸收说明有杂质，可能是稠环芳香有机试剂的污染。
2、适合测量纯度高的蛋白样品，不能测量含有杂质的蛋白样品：通过公式：A=E*b*c，我们能够发现，c值是与吸光度A成正比的，如果样品中含有杂质成分，且杂质在280处有吸收峰的话就会造成测量值不准，一般我们提蛋白过程中使用的有机试剂如果残留的话就会造成测量蛋白值不准的情况。
3、测量两个样品中间务必要用吸水的面巾纸和蒸馏水清洁超微量核酸蛋白分析仪测量臂：如果不做清洁，残留的样品会对后来样品的测量造成影响。切记不要用擦镜纸擦拭，因为擦镜纸不吸水。
4、测量同一个样品的时间不宜过长：因为上样量很少，随着时间的推迟样品会有所蒸发，造成测量出来的浓度有误差。
5、如果测量值不是很准，建议可以把样品稀释到适当浓度再进行测量。
6、如果感觉超微量核酸蛋白分析仪的平衡性不好，可以通过以下方法检测：反复测量空气，两次测量之间间隔5秒，测出的吸光度值应该小于0.04，说明平衡性良好。
